Cover Image

Membran Alga Hijau Untuk Jerapan Asid Salisilik

Cheng Wai Chun, Rizafizah Othaman

Abstract


Penyelidikan ini dijalankan adalah untuk menghasilkan membran biopolimer daripada alga untuk merawat air yang mengandungi pencemar memuncul seperti asid salisilik dan mengkaji kesan rendaman kimia dan masa rawatan terhadap prestasi jerapan membran alga. Alga dirawat dengan menggunakan bahan kimia seperti natrium hidroksida, NaOH dan asid hidroklorik, HCl dengan perbezaan masa 1 jam, 2 jam, 4 jam, 8 jam, dan 24 jam. Kemudian alga hijau diacuankan menjadi membran. Ujian jerapan asid salisilik dijalankan dan kepekatan asid salisilik diuji dengan menggunakan spektrofotometer ultra lembayung-nampak. Teori isoterma penjerapan Langmuir digunakan untuk menjelaskan sifat keseimbangan jerapan alga. Pencirian membran alga hijau dilakukan dengan menggunakan kaedah-kaedah seperti analisis spektroskopi infra-merah transformasi Fourier (FTIR), analisis mikroskopi imbasan elektron tekanan berubah-ubah (VPSEM), dan analisis termogravimetrik (TGA). Membran alga dirawat dengan asid selama 4 jam menunjukkan peratus jerapan asid salisilik yang paling tinggi. Analisis SEM menunjukkan alga dirawat asid mempunyai luas permukaan yang lebih besar. Analisis spektroskopi FTIR menunjukkan tiada perbezaan kumpulan berfungsi yang ketara antara alga dirawat dan tanpa rawatan. Analisis TGA pula menunjukkan alga dirawat bes mempunyai kestabilan haba yang paling rendah. Membran biopolimer daripada alga berjaya dihasilkan dan dapat menjerap asid salisilik.


Keywords


alga, biopolimer, pencemar memuncul, asid salisilik, membran

Full Text:

PDF

References


Najat, A. 2015. Detecting Human Pharmaceutical Pollutants in Malaysian Aquatic Environment : A new challenge for water quality management Detecting Human Pharmaceutical Pollutants in Malaysian Aquatic(October).

Al-Homaidan, A.A., Alabdullatif, J.A., Al-Hazzani, A.A., Al-Ghanayem, A.A. & Alabbad, A.F. 2015. Adsorptive removal of cadmium ions by Spirulina platensis dry biomass. Saudi Journal of Biological Sciences 22(6): 795–800.

Dean, A.P., Martin, M.C. & Sigee, D.C. 2007. Resolution of codominant phytoplankton species in a eutrophic lake using synchrotron-based Fourier transform infrared spectroscopy. Phycologia 46(2): 151–159.

Benning, L.G., Phoenix, V.R., Yee, N. & Konhauser, K.O. 2004. The dynamics of cyanobacterial silicification: An infrared micro-spectroscopic investigation. Geochimica et Cosmochimica Acta 68(4): 743–757.

Heraud, P., Wood, B.R., Tobin, M.J., Beardall, J. & McNaughton, D. 2005. Mapping of nutrient-induced biochemical changes in living algal cells using synchrotron infrared microspectroscopy. FEMS Microbiology Letters 249(2): 219–225.

Giordano, M., Heraud, P., Beardall, J., Giordano, M. & Al, E.T. 2001. Fourier Transform Infrared Spectroscopy As A Novel Tool To Investigate Changes In Intracellular Macromolecular Pools In The Marine Microalga Chaetoceros Muellerii (Bacillariophyceae ) 1 Fourier Transform Infrared ( FT-IR ) spectroscopy was used to study 279: 271–279.

Vardy, S. & Uwins, P. 2002. Fourier Transform Infrared Microspectroscopy as a Tool to Differentiate Nitzschia closterium and Nitzschia longissima. Applied Spectroscopy 56(12): 1545–1548.

Chiovitti, A., Heraud, P., Dugdale, T.M., Hodson, O.M., Curtain, R.C.A., Dagastine, R.R., Wood, B.R. & Wetherbee, R. 2008. Divalent cations stabilize the aggregation of sulfated glycoproteins in the adhesive nanofibers of the biofouling diatom Toxarium undulatum. Soft Matter 4(4): 811.

Murdock, J.N., Dodds, W.K. & Wetzel, D.L. 2008. Subcellular localized chemical imaging of benthic algal nutritional content via HgCdTe array FT-IR. Vibrational Spectroscopy 48(2): 179–188.

Steer, J. 2005. Structure and Reactions of Chlorophyll. http://www.ch.ic.ac.uk/local/projects/steer/chloro.htm (8 April 2018)

Rantuch, P. & Chrebet, T. 2014. Thermal Decomposition of Cellulose Insulation 48(Table 1): 461–467.


Refbacks

  • There are currently no refbacks.